dsGreen für Echtzeit-PCR, 100×

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A1010 50 uL –   Auf Lager
11010 100 uL $39 Auf Lager
41010 1 mL $235 Auf Lager
71010 5 mL $510 Auf Lager
91010 50 mL $2670 Auf Lager
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dsGreen dient dem sensitiven Nachweis doppelsträngiger DNA. Die hohe Nachweisempfindlichkeit und Selektivität für dsDNA ermöglichen die Anwendung von dsGreen als universelles Nachweisreagenz in der qPCR. Es besteht keine Notwendigkeit für den Einsatz markierter Sonden – unmarkierte Primer sind hierfür ausreichend.

Im Unterschied zu dem dsGreen-Präparat für die Gelfärbung ist diese Formulierung speziell für den Einsatz in der Echtzeit-PCR (Polymerasekettenreaktion) bestimmt. Sie zeichnet sich durch folgende Eigenschaften aus:

  • Die Konzentration des Farbstoffes ist auf den Einsatz in der Realtime-PCR ausgelegt und entsprechend sorgfältig eingestellt, sodass die Experimente von Charge zu Charge gut reproduzierbar bleiben.
  • PCR-erprobte Präparation – garantierte Qualität
  • Niedriger Fluoreszenz-Hintergrund – starke Intensitätszunahme durch Bindung von dsDNA.

Anregungs- und Emissionsspektra des dsDNA-Komplexes mit dsGreen

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: hellorangefarbene Lösung
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95 %), PCR-Test
Lagerungsbedingungen: Lagerung: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden.
Sicherheitsdatenblatt: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: 490
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 73000
Emissionsmaximum / nm: 524
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0,8

Zitierungen

  1. Huber, R.; Lee, J.; Borretta, L.; Tessier-Cloutier, B.; Lum, A.; Yip, S.; Horst, B.A. TERT promoter mutations in atypical melanocytic lesions: A series of seven cases with adverse melanoma-specific outcome. Human pathology, 2024, 144, 34-39. doi: 10.1016/j.humpath.2024.01.003
  2. Mazunina, E.P.; Gushchin, V.A.; Kleymenov, D.A.; Siniavin, A.E.; Burtseva, E.I.; Shmarov, M.M.; Mukasheva, E.A.; Bykonia, E.N.; Kozlova, S.R.; Evgrafova, E.A.; Zolotar, A.N.; Shidlovskaya, E.V.; Kirillova, E.S.; Krepkaia, A.S.; Usachev, E.V.; Kuznetsova, N.A.; Ivanov, I.A.; Dmitriev, S.E.; Ivanov, R.A.; Logunov, D.Y.; Gintsburg, A.L. Trivalent mRNA vaccine-candidate against seasonal flu with cross-specific humoral immune response. Frontiers in Immunology, 2024, 15, 1381508. doi: 10.3389/fimmu.2024.1381508
  3. Bykonia, E.N.; Kleymenov, D.A.; Gushchin, V.A.; Siniavin, A.E.; Mazunina, E.P.; Kozlova, S.R.; Zolotar, A.N.; Usachev, E.V.; Kuznetsova, N.A.; Shidlovskaya, E.V.; Pochtovyi, A.A.; Kustova, D.D.; Ivanov, I.A.; Dmitriev, S.E.; Ivanov, R.A.; Logunov, D.Y.; Gintsburg, A.L. Major Role of S-Glycoprotein in Providing Immunogenicity and Protective Immunity in mRNA Lipid Nanoparticle Vaccines Based on SARS-CoV-2 Structural Proteins. Vaccines, 2024, 12(4), 379. doi: 10.3390/vaccines12040379
  4. Sakhabutdinova, A. R.; Chemeris, A. V.; Garafutdinov, R. R. Detection of Specific RNA Targets by Multimerization. Biochemistry (Moscow), 2023, 88(5), 679–686. doi: 10.1134/S0006297923050103
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